支原體qpcr法檢測：樣本的處理與DNA提取
支原體qPCR法檢測操作過程
本流程旨在通過實時熒光定量PCR(qPCR)技術(shù)，對樣本中的支原體（Mycoplasma）DNA進行特異性擴增與檢測，以判斷樣本是否受到支原體污染。整個過程包括樣本處理、DNA提取、qPCR反應(yīng)體系配制、擴增程序運行及結(jié)果分析。
一、實驗前準(zhǔn)備
實驗室分區(qū)管理
遵循“三區(qū)原則”：樣本處理區(qū)、試劑準(zhǔn)備區(qū)、擴增與產(chǎn)物分析區(qū)，避免交叉污染。
各區(qū)域使用專用移液器、耗材和工作服。
試劑與儀器準(zhǔn)備
qPCR儀
離心機、渦旋振蕩器、微量移液器
支原體DNA提取試劑盒
支原體特異性qPCR檢測試劑盒（含引物、探針、dNTPs、Taq酶、緩沖液等）
無菌無酶PCR管、槍頭
陽性對照（支原體DNA）、陰性對照（無菌水）、內(nèi)參對照（如18SrRNA，用于檢測提取效率）
引物與探針設(shè)計（若使用自建體系）
靶基因：常用保守序列如16SrRNA基因或P1黏附蛋白基因。
探針標(biāo)記：通常為FAM熒光標(biāo)記，淬滅基團為BHQ1或TAMRA。
二、樣本處理與DNA提取
樣本類型
細(xì)胞培養(yǎng)上清、血清、尿液、拭子樣本等。
DNA提取步驟（以液體樣本為例）
取1mL樣本，13,000rpm離心5分鐘，棄上清。
沉淀中加入裂解液（BufferATL）和蛋白酶K，56℃水浴孵育1小時。
加入乙醇，混勻后轉(zhuǎn)移至DNA純化柱。
依次用洗滌液（AW1、AW2）洗滌。
最后用50–100μL無酶水洗脫DNA，-20℃保存?zhèn)溆谩?/div>
400-166-8600
當(dāng)前位置：